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(1)可能為轉染效率低a.優(yōu)化轉染實驗條件,用較易轉染的質(zhì)粒做陽性對照(如轉染過表達熒光蛋白質(zhì)粒);b.確保轉染DNA的質(zhì)量,可通過酶切或瓊脂糖凝膠電泳的方法對DNA質(zhì)量進行鑒定;c.選擇活性較高,處于指數(shù)分裂期的細胞進行轉染。(2)可能為啟動子活性低或誘導失敗a.轉染后的細胞培養(yǎng)使用特異性誘導啟動子的條件;b.優(yōu)化細胞的培養(yǎng)條件,提高螢光素酶的表達量;c.更換強啟動子(如SV40、CMV)。注:海腎螢光素酶基因作為內(nèi)對照,其表達應不受時期、部位、環(huán)境影響,因此常用組成型表達的TK啟動子。(3)樣品裂解效率低a.細胞培養(yǎng)時間不宜過長,12-36h內(nèi)最好,長時間培養(yǎng)后,細胞可能會難裂解。b.加入的裂解液需足量,保證細胞能夠充分裂解。(4)檢測過程操作不規(guī)范a.選擇合適的檢測儀器,能夠檢測化學發(fā)光或者生物發(fā)光的儀器都適用于該實驗;b.需加入足量底物,保證底物的飽和,否則會造成檢測結果出現(xiàn)很大偏差;c.室溫反應。反應時各個組分(細胞裂解產(chǎn)物,底物工作液等)都需要調(diào)整到室溫;d.螢光素酶的半衰期一般約30min,加完底物后可立即檢測,盡量在30min內(nèi)完成。(5)底物氧化失效a.底物避光密封保存,螢火蟲螢光素酶底物-20℃保存;海腎螢光素酶底物推薦-80℃保存;b.反應工作液建議現(xiàn)用現(xiàn)配。◆進行檢測的過程中,螢光信號值太高該如何進行調(diào)整?(1) 減少質(zhì)粒轉染量。(2)細胞樣品裂解后,離心取上清后檢測或?qū)α呀猱a(chǎn)物進行稀釋后檢測。注:不建議通過減少底物量來降低熒光值,需要保證底物的飽和來反映螢光素酶真實的表達水平,否則會造成檢測結果出現(xiàn)大的偏差。
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